Mikroskopische Färbemethoden                  Botanik

Fuchsin-Chrysoidin-Astrablau nach Etzold (FCA-Färbung)
Benötigte Chemikalien :
Neufuchsin (C.I. 42520), Chrysoidin (C.I. 11270), Astrablau (C.I. 48048), denat. Ethanol (kein Brennspiritus), Isopropanol 100%ig, Eisessig, evtl. Xylol

Bemerkung :
Nach Mitteilung der Mikroskopischen Gesellschaft Wien

Literatur :  

    Arbeitsablauf :
  1. Entparaffinierte Schnitte gründlich in Aqua dest. spülen.
  2. FCA-Farblösg.     5-8 Min. gelegentlich schwenken.
  3. Kurz abspülen in Aqua dest.
  4. In zwei Portionen Ethanol 30%ig abspülen.     je 30 Sek.
  5. In Ethanol 70%ig differenzieren     ca. 30 Sek.
  6. In zwei Portionen Ethanol 30%ig abspülen.     je 30 Sek.
    der Rest des überschüssigen Farbstoffes geht ab.
  7. Entwässern in zwei Portionen abs. Isopropanol     je 1 Min.
  8. Je nach Einschlußmittel über Xylol oder gleich einschließen.

Schonende Schnellmethode :
Wie oben, nur nach dem Aufbringen des Farbstoffes auf den Objektträger, diesen ca. 40 Sek erhitzen, so daß er mit der Hand gerade noch gehalten werden kann.
Nicht kochen oder gar eintrocknen lassen.

Ergebnis :
Verholzte Zellwände rot, oft in verschiedenen Farbtönen (Sklerenchym purpurrot, Xylem: ziegel- bis gelbrot). Eingewachsenen Steinzellen orange. Holzfasern dunkelrot, Markstrahlenzellen mehr gelbrot, cutinisierte Zellwände gelb bis orangerot. Unverholzte, nicht cutinisierte Zellwände blau, Korkschichten ungefärbt. Mittellamellen verkorkter Zellen oft rot (verholzt). Kallose sowie Reservezellulose in Samen ungefärbt. Plasma meist rötlich. Zellkerne rot oder blau.
Bei der Betrachtung wird eine Kontrastverbesserung bei Verwendung eines BG 38 Filters (blaugrün, 3mm dick) erreicht.