Masson-Goldner-Färbung

Mikroskopische Färbemethoden Zoologie

Benötigte Chemikalien :
Eisenhämatoxylin nach Weigert, Azophloxin (C.I.18050), Säurefuchsin (C.I.42685), Ponceau de Xylidine (C.I.16150), Orange G (C.I.16230), Lichtgrün SF (C.I.42095) oder Anilinblau ws (C.I. 42755), Eisessig, Molybdatophosphorsäure oder besser Wolframatophosphorsäure, abs. Ethanol oder Isopropanol, Xylol

Bemerkung :
Die Färbung gelingt besonders gut nach Fixierung mit Bouin.
Das Lichtgrün SF kann auch durch Anilinblau wasserlösl. ersetzt werden.

Literatur :
HistTech S.115 / MT68 §1540

Arbeitsablauf :

Weigert´s Eisenhämatoxylin 1-2 min ! Nicht Überfärben !

Spülen in fließendem Wasser 10-15 min.

Ponceau-Säurefuchsin-Azophloxin 5-7 min

Abspülen in 1%iger Essigsäure

Differenzieren in Molybdatophosphorsäure-Orange oder Wolframatophosphorsäure-Orange bis zur völligen Entfärbung des Bindegewebes. (gewöhnlich genügen einige Minuten)

Kurz abspülen in 1%iger Essigsäure

Gegenfärbung mit Lichtgrün (bzw. Anilinblau) 5 min.

Auswaschen in 1%iger Essigsäure 5 min.

rasch entwässern in abs. Alkohol (abs. Isopropanol)

Xylol, Einschlußharz

Ergebnis :
Kerne braunschwarz, Cytoplasma schwachorange bis rot, Erythrocyten leuchtend rot, Bindegewebe und Schleim grün, Muskelgewebe blaßrot

Ansätze :

Masson-Lösung : 0.2g Ponceau de Xylidine, 0.1g Säurefuchsin in 300ml Aqua dest. kurz kochen, dann 0.6ml Eisessig zugeben und filtrieren.

Azophloxin-Lösg.: 0.5g Azophloxin werden in 100ml Aqua dest., das mit 0.2ml Eisessig versetzt wurde, gelöst.

Ponceau-Säurefuchsin-Azophloxin : 88ml 0.2%ige Essigsäure mit 7ml Masson-Lösung und 2ml Azophloxinlösung versetzen.

Molybdatophosphorsäure-Orange : 3-5g Molybdatophosphorsäure und 2g Orange G in 100ml Aqua dest. lösen.

Wolframatophosphorsäure-Orange : 3-5g Wolframatophosphorsäure und 2g Orange G in 100ml Aqua dest. lösen.

Lichtgrün : 0.1-0.2g Lichtgrün SF in 100ml Aqua dest., das mit 0.2ml Eisessig versetzt wurde, lösen.
Statt Lichtgrün kann auch Anilinblau ws verwendet werden.